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為什么使用了wako的PVSK滴定溶液(貨號167-28105,替代164-21655),測陽離子電荷密度的結果和原先有偏差[ 2019-04-12 11:27 ]
在膠體滴定法中,聚乙烯醇硫酸鉀滴定液用作參照試劑。為保證可追溯性,以確保檢測值與國際慣例一致,Fuji-Wako通過與國際先進工業科學和技術研究院 (AIST)的合作,開發了符合SI體系的標定方法,丙提供符合國際機構(SI)可追溯評價體系的PVSK滴定溶液。此次方法修改后,對各個產品的測量產生一定的影響,如下所示。綜合所述,您的實驗現象正常,不需要進行實驗條件的調整。
凝膠滲透色譜法的驗證[ 2018-11-08 13:22 ]
用于測定聚苯乙烯和其它四氫呋喃可溶聚合物的數均、重均、粘均、峰均,Z均,分子量分布和特性粘度
有關分子量的若干問題 - 一個已知聚合物樣品其分子量是什么?[ 2018-10-31 09:50 ]
聚合物不具有單一的分子量;我們通常用一系列分子量的平均值來表征聚合物,例如,重均(Mw),數均(Mn),以及其它。
纖維素內切酶T片劑(T-CTZ)可以替代羧甲基纖維素(CMC)用于不同來源的纖維素酶檢測嗎?[ 2018-07-13 13:31 ]
我們推薦所有的纖維素內切酶檢測都使用纖維素內切酶T片劑(T-CTZ),完全替代CMC。
【技術問答】Ludger DMB唾液酸釋放標記試劑盒問題集錦[ 2018-04-12 09:21 ]
Ludger DMB唾液酸釋放標記試劑盒問題集錦
纖維素內切酶T片劑(T-CTZ)能用于牛仔布洗滌工序中纖維素酶活性的精確測定嗎?[ 2018-03-14 15:49 ]
制定纖維素酶用于牛仔布洗滌標準化工序的公司也同樣使用Megazyme的纖維素內切酶T片劑(T-CTZ)產品。
我們使用纖維素內切酶T片劑(T-CTZ)作為纖維素酶分析的底物,但使用了與指導手冊上不同的參數。我該如何計算活性?[ 2018-02-23 15:36 ]
你需要建立新的標準曲線。首先, 按CM-纖維素 4M和Nelson/Somogyi還原糖方法,標定經純化的纖維素內切酶的活性。然后,使用標定的酶來生成標準曲線。這也是我們生成標準曲線的方法。
能在不同溫度下進行纖維素內切酶T片劑(T-CTZ)檢測么?[ 2018-02-07 09:37 ]
可以在不同溫度下進行纖維素內切酶T片劑檢測。不過這樣操作,因使用了不同參數,會影響到標準曲線。 可以根據你自己的條件,按例如CM-纖維素 4M和Nelson/Somogyi還原糖的方法標定純化的纖維素內切酶的活性。然后,用經標定的酶來生成標準曲線。這也是我們生成標準曲線的方法。
能在pH6.2而不是pH4.5下進行纖維素內切酶T片劑(T-CTZ)檢測么?[ 2018-01-30 13:03 ]
可以在pH6.2下進行纖維素內切酶T片劑檢測。我們建議你使用馬來酸鹽緩沖液(使用馬來酸制備成25mM濃度的溶液)。我們還建議停止與磷酸三鈉的反應(用于調節pH11.0)。
Ludger IgG N-多糖文庫,2-AB標記(CAB-IGG-01)怎么用?[ 2018-01-24 14:18 ]
Ludger IgG N-多糖文庫,2-AB標記是13個聚糖的混標,是一個校正標準品,在糖基化分析中有著重要的作用。但是該產品國外沒有具體的說明書,所以客戶在使用過程中經常遇到問題。本文就常用問題做一下解答。
為什么纖維素內切酶檢測片劑(T-CTZ)顏色會斑駁?而且水分含量似乎比之前的批次要高?[ 2018-01-24 09:41 ]
如果容器敞開,會導致檢測片劑水分含量發生變化。變化范圍從1.5%到2.1%,對于檢測是沒有影響的。檢測片劑之所以是雜色,是因為它們是由黑色的活性物質和白色的乳糖填充劑構成的混合物。
請問能使用之前一批次的纖維素內切酶檢測片劑(T-CTZ)生成的標準曲線用新一批的檢測片劑嗎?[ 2018-01-16 10:18 ]
不可以。標準曲線必須與批號匹配。
α-淀粉酶檢測片劑該在何時加入到試劑空白樣中?[ 2018-01-09 09:33 ]
α-淀粉酶檢測片劑應該在Tris堿溶液后面加入,并在室溫下保持5分鐘。
為什么天青交聯顯色底物會受濃度超過100mM的鹽溶液抑制?[ 2018-01-03 10:54 ]
鹽溶液之所以會抑制,是因為它限制了染色交聯的膠體顆粒的膨脹 - 這無疑是會產生空間位阻的。
片劑測試是否可以使用微孔板的形式?[ 2017-12-26 11:19 ]
片劑測試不能使用微孔板的形式。由于酶標儀無法切換通路長度為1cm,酶標儀無法在590nm下讀取濾液的吸光率讀數。
不同型號的木聚糖酶檢測片有什么不同?[ 2017-12-19 11:37 ]
木聚糖酶, 木聚糖酶 AX 和 木聚糖酶 AF檢測片都包含染色和交聯的不溶性 AZCL-阿拉伯木聚糖(小麥)。T-XYZ, T-XAX 和 TXAF的主要區別是片劑的尺寸不同(例如T-XYZ為100mg,而T-XAX為60mg,T-XAF則為40mg),且在檢測方式上略有差別。
4-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷(o-PNPBG)如何用于檢測β-葡萄糖苷酶?[ 2017-12-12 16:40 ]
4-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷按以下規程用于β-葡萄糖苷酶檢測,不過緩沖溶液可以配合受檢的酶溶液的pH值進行調整。
4-硝基苯糖苷酶底物如何應用于比色法測定酶活性?[ 2017-11-28 12:58 ]
酶溶液稀釋: 將酶制劑稀釋到適當的分析緩沖液中(100 mM 0.1 mg/mL 牛血清白蛋白,在酶經檢測最佳pH范圍內)。
Megazyme各個α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶的底物特異性分別是怎樣的?[ 2017-11-22 13:47 ]
α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶(青春雙岐桿菌)(E-AFAM2)和α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶 B17(卵形擬桿菌)(E-ABFBO17) 對于(1-4)-b-D-木寡糖的D-木糖呋喃糖殘基上鏈接單取代的 (1-3)或(1-2)a-L-阿拉伯呋喃糖族完全沒有作用, 無論是否在木寡糖鏈內或者是處在非還原端。
怎么讓硫酸銨-酶懸浮液變得可溶?[ 2017-10-31 10:14 ]
酶是從硫酸銨溶液中析出的沉淀物,因此可以離心使酶成為小顆粒,重新懸浮在合適的緩沖溶液中用于后續的分析。
如何使用在硫酸銨里的酶?[ 2017-10-17 09:46 ]
當酶和硫酸銨一起時,酶析出呈白色沉積物。終端用戶在使用之前,應先旋轉瓶子,使析出的酶形成均勻的樣品。
如何制備液態奶樣品?[ 2017-10-10 09:58 ]
液態奶樣品推薦按如下過程制備。注意: 測試中上清液的體積可根據檢測所采用的靈敏度進行調整。
試劑盒里的組分是否會作為單獨的產品出售?[ 2017-09-26 10:05 ]
Megazyme不會提供試劑盒組分作為獨立產品銷售。
如何確定樣品會干擾檢測?[ 2017-09-19 10:02 ]
如果擔心檢測時可能有干擾,可以在樣品制備前先加入已知數量的標準溶液,然后根據獲得的回收率,比較純樣品和純標準樣的回收率進行評估
NAD+溶液在-20°C等分儲存時呈輕微的黃色。請問是否仍可以使用?[ 2017-09-12 09:52 ]
NAD溶液呈微黃色是因為NAD的穩定形成。如果使用人員對試劑盒中任何組分存疑,在測試當前樣品之前,推薦先使用試劑盒的標準控制樣進行檢測,并確保獲得預期值在可接受的波動范圍內再進行實測。
收到試劑盒以后,如何保存試劑盒里的試劑?[ 2017-09-05 09:38 ]
對于保質期較長(穩定性高)的試劑盒,其組分應按照每種試劑的標簽上聲明的溫度條件進行儲存。
為什么試劑盒組分的量不匹配,部分組分消耗完時,仍有一些組分剩余?[ 2017-08-30 13:11 ]
對于試劑盒里各種組分的分量,Megazyme的要務是為終端用戶提供充足的每一種組分,以確保能輕易達到試劑盒申明的測試數。
能即刻制備少于1L的GOPOD試劑(葡糖氧化酶/過氧化酶試劑)?[ 2017-08-23 10:47 ]
不行。完全沒可能即刻制備少于1L體積的GOPOD試劑,因為試劑盒組分不能再分成更小的體積。瓶4中裝的是酶的凍干粉末,它是由酶溶液制備而來,因此我們無法提供該組分的重量。GOOD試劑制備后,試劑避光保存,可在2-5°C下穩定3個月或在-20°C下穩定12個月,因此我們建議制備后可以分成合適的等分。
MegaCalc如何使用?為什么MegaCalc看起來像鎖死了?[ 2017-08-15 10:12 ]
MegaCalc是基于Excel的電子表格工具,可以非常簡便地自動計算和分析原始數據。每一個MegaCalc應用都是對應一個特定的Megazyme 檢測試劑盒,可以在該試劑盒的產品頁面下載。
波長不是340nm,能否進行NAD(P)偶聯分析?[ 2017-08-08 09:57 ]
是的,可以在365nm或334nm下進行。
產品警示性技術說明[ 2017-08-02 13:59 ]
預期用途: 本品僅限體外診斷或研究使用,不能用于藥物及食品。 安全防護: 1、使用時戴防滲透手套; 2、避免與眼睛及皮膚直接接觸; 3、保持環境良好通風; 4、如不小心與皮膚或眼睛接觸,用肥皂和大量流水沖洗; 5、切勿給失去知覺者從嘴里喂食任何東西,不慎誤食,應視危危害情況立即去醫療機構處理。 存貯安全: 1、陰涼干燥或指定低溫條件保存; 2、防潮,密閉保存;容器具應具有良好的阻隔性; 3、應避免強光直接照射; 4、杜絕與熱源物接觸。 環境維護: 所產
制備緩沖液時是否一定要加疊氮鈉?[ 2017-08-01 09:26 ]
緩沖溶液里加疊氮鈉作為防腐劑以預防微生物增殖。完全可以從緩沖溶液里排除疊氮鈉而不影響檢測性能。不過請注意如果緩沖液中不加疊氮鈉,緩沖液可能不如說明書描述的性能那樣穩定。
使用Megazyme檢測試劑盒時, 該使用哪種比色皿有利于讀取吸光值?[ 2017-07-25 15:13 ]
紫外/可見光比色分析法要求讀取分光光度計吸光度時,可以使用方型比色皿或比色管。
Megazyme檢測試劑盒有效期已經過期,還能不能用?[ 2017-07-18 09:36 ]
當試劑盒的有效期已經過了,Megazyme不能保證該檢測試劑盒的性能。 最佳選擇是替換掉該試劑盒。如不這么操作,建議先檢測試劑盒提供的標準控制樣 - 如果得到期待的數據,可推定該試劑盒仍符合標準。
使用Megazyme試劑盒測含量時,樣品的最小吸收率差是否必須至少是0.1?[ 2017-07-11 10:11 ]
不一定。0.1吸收率差僅僅是推薦值。吸收率的最低可接受差值是由分析人員和設備(例如移液管和分光光度計)測定,且最終由用戶決定。
淀粉損傷檢測試劑盒(K-SDAM)中附帶的淀粉標準允許的誤差是多少[ 2017-07-04 09:46 ]
該樣品可允許誤差不應該超過0.2%。我們注意到近些年來,淀粉損傷的測定結果呈輕微下降之勢(例如近4年來,6.2%的淀粉損傷,呈0.2%的下降)。這大致可歸因為樣品中水份的變化
使用Megazyme檢測試劑盒進行定量分析時,其精度和可重現性如何?[ 2017-06-27 09:36 ]
Megazyme檢測試劑盒檢測結果是極其準確的 – 在Megazyme的質量控制范圍內,檢測結果的精度和可重現性相對控制標準的誤差在2%以內。
用檢測試劑盒進行定量分析之前,該使用多少樣品用于凈化和萃取?[ 2017-06-20 15:24 ]
樣品的體積/重量和萃取的體積可根據不同樣品進行調整。這個最終由待檢物質的數量所決定,并且可能需要依據經驗進行判定。 對于待檢物質含量水平很低的樣品來說,萃取體積比可以增加一些(例如增加樣品的數量或者減少總萃取體積)。
酶法食品檢測試劑盒的靈敏度能提高嗎?[ 2017-06-13 09:32 ]
分析低濃度的樣品時,可以增加試劑盒分析時使用的樣品體積,以提高靈敏度。此時,調節水的體積以保持與最終檢測體積相等。對于手工分析而言,這是至關重要的,因為檢測體積和樣品體積都用于計算結果。
Megazyme檢測試劑盒中所提供的酶和緩沖溶液的有效期是多長?[ 2017-06-06 09:59 ]
所有的試劑盒組成如果按產品標簽申明的發放保存可以自收到產品之日起穩定2-3年。
在使用試劑盒分析時,怎樣才能算出提取多少樣品和樣品應稀釋到什么程度?[ 2017-06-01 09:44 ]
當液體樣品中待檢物質的數量未知時,推薦制備一系列的樣品稀釋液,以確保測定相關含量樣品所獲得的吸收度變化呈線性分布。
微孔板能加入多于2μL 的酶嗎?[ 2017-05-26 14:44 ]
可以。加入2μL酶懸浮液的替代方案,是將酶溶液稀釋后,加入更多體積的稀釋液進行孔板分析。
Megazyme檢測試劑盒能用來測量生物液體么?需要怎么制備處理樣品?[ 2017-05-15 12:26 ]
假設待檢物質樣品制備后(如需要),其濃度高于試劑盒的檢測限,則該試劑盒可以用來分析生物液體的含量。
在使用試劑盒進行測試之前需要對樣品進行特別處理么?[ 2017-05-03 14:32 ]
樣品制備取決于樣品,有些樣品可以直接用于測試或僅需適當稀釋,而另外一些樣品在測試之前需要進行進一步的樣品制備。
使用Megazyme食品檢測試劑盒檢測固體樣品結果如何計算?[ 2017-04-17 11:30 ]
固體樣品的結果是按照 g/100 g原始的固體物質來計算的。對于固體樣品,如果濃度是按(g/L)形式表示的,你可以把數據填入Mega-Calc電子表格中樣品(g/L)欄里。稀釋系數是“1”,除非樣品在最初制備后經過進一步稀釋。
手動分析模式可以縮減套用到96微孔板檢測嗎?[ 2017-04-11 11:29 ]
大部分Megazyme檢測試劑盒是按手動模式在比色皿中檢測的,不過可以轉化使用96孔微孔板檢測。要做到這一點,手動比色皿的檢測體積要縮小10倍。- Megazyme 酶法食品檢測試劑盒 FAQs (8)
你們推薦的移液器誤差和準度范圍是多少?[ 2017-03-27 10:00 ]
不考慮試劑盒檢測的具體要求,我們推薦的移液器誤差和準度分別為2%和5%。
試劑盒的性能可能有問題,結果與預期不一致!我該怎么辦?[ 2017-03-23 10:41 ]
如果你懷疑Megazyme檢測試劑盒性能未達到預期,例如沒有得到預期的檢測結果,請按以下步驟執行。
Megazyme試劑盒中不包含某些化合物。請問能使用與檢測程序所推薦相當的化合物替代么?[ 2017-03-21 11:23 ]
只要與推薦的質量指標一致,使用相當的化合物用于檢測就沒有什么問題。
有時候檢測空白樣時會出現負吸收值,這正常嗎?在計算結果時,是應該使用真實值(負值)還是用“0”?[ 2017-03-20 13:05 ]
有時候上次檢測的組份存在,由于稀釋效應的存在,會引起空白樣的檢測出現小小的負值。在這種情況發生時,在計算結果時,推薦使用真實的吸收值。
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